诱导培养基和增殖培养基的配制需基于植物种类、外植体类型及实验目标进行精准设计，但其核心流程一致：?以合适的基础培养基为载体，添加特定比例的植物生长调节剂，并严格控制理化条件。以下是系统性配制方法：
一、通用配制流程（适用于大多数植物组织培养）
无论诱导或增殖阶段，培养基配制均遵循以下步骤：
计算与称量
根据目标培养基配方，精确称取大量元素、微量元素、铁盐、维生素、蔗糖、琼脂及植物激素。
溶解与混合
将各成分依次加入约2/3体积的蒸馏水中，加热搅拌至完全溶解（琼脂需加热熔化）。
调节pH值
使用0.1 mol/L NaOH或HCl将培养基pH调整至5.8（多数植物适宜范围为5.6–6.0）。
定容与分装
加蒸馏水定容至所需体积，分装入三角瓶或试管中。
加塞包扎与灭菌
用棉塞封口，外包牛皮纸，采用高压蒸汽灭菌（121℃、0.103 MPa，维持15–20分钟）。
无菌检查与保存
灭菌后于37℃恒温培养24–48小时确认无菌，随后置于2–8℃避光保存备用。
关键提示：激素应在灭菌前加入，但对热敏感的物质（如某些抗生素）可在冷却至约60℃时再添加。
二、诱导培养基的特异性配制要点
诱导培养基的核心是?启动细胞脱分化或器官发生，常用于外植体初代接种。
常见配方结构：
基础培养基：MS培养基最常用，营养全面。
植物激素组合：
细胞分裂素（如6-BA）：0.5–2.0 mg/L，促进芽原基形成；
生长素（如NAA或2,4-D）：0.1–0.5 mg/L（诱导芽），或更高浓度用于愈伤组织诱导。
附加成分：蔗糖30 g/L，琼脂6–7 g/L（固体培养基）。
三、关键差异总结
实践建议：可通过预实验优化激素配比，结合外植体响应动态调整方案。
四、增殖培养基的特异性配制要点
增殖培养基旨在?高效扩增已形成的不定芽或丛生芽，强调繁殖系数与遗传稳定性。
常见配方结构：
基础培养基：MS或WPM，部分植物使用1/2MS以降低盐分抑制。
植物激素组合：
细胞分裂素（如6-BA）：浓度?高于诱导阶段?（如3.0–4.0 mg/L），强烈促进腋芽萌发；
生长素（如NAA）：浓度?低于诱导阶段（如0.1 mg/L），避免过度生根或愈伤化。
可选添加物：活性炭（0.02%）用于吸附有害代谢物，提高芽质量。
